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TSHR及TRAb研究的實際應用

更新時間:2022-07-27點擊次數:2591

 

 

促甲狀腺激素受體(TSH Receptor,TSHR)在體內外場景中均具有廣泛的應用。人抗TSHR單克隆抗體可用于TSHR自身抗體(TRAb)的檢測,有助于自身免疫性甲狀腺疾病的診斷和治療。這些TSHR單抗中,以M22™代替現有檢測法中的TSH是目前靈敏度和特異性*高的檢測方法。目前實現商品化的M22™已作為世界衛生組織促甲狀腺抗體的國際參考物質,用于TRAb檢測方法的校準。

 

具備熱穩定性的TSHR胞外結構域,可在體外環境中穩定結合患者血清中的TRAb,這為提高TRAb檢測法的特異性帶來積極的實用價值。除此之外,人TSHR單克隆抗體作為新的治療手段也有很好的前景,有望輔助控制Graves病、Graves眼病和甲狀腺癌患者體內的TSHR活性。

 

 

 

背景


 

早在1956年,Adams和Purves就shou次報道了甲狀腺疾病患者血清中,存在與TSH不同的長效甲狀腺刺激因子(LATS) [1]。當時研究發現LATS刺激甲狀腺的機制與血清蛋白的IgG部分相關。1974年,RSR創始人Smith博士與Hall的聯合研究證實了Graves病患者血清中這種因子實質上是特異性靶向TSHR的自身抗體(即TRAb),而TRAb對TSHR的刺激是造成Graves病患者甲狀腺功能亢進的病因[2]。這一研究結果促進了第一代TRAb體外檢測方法的發展,為自身免疫性甲狀腺疾病(AITD)的輔助診斷和管理提供依據。


TSHR研究的下一個重要里程碑是1989 - 1990年,在四個獨立實驗室中克隆了TSHR基因[3-7]。這為TSHR單克隆抗體的體外制備提供更多基礎。


2003年,Smith博士從一名Graves病患者的外周血淋巴細胞中,分離出促甲狀腺激素受體單克隆自身抗體(稱為M22™)[8]。隨后發現的多種TSHR單克隆自身抗體中,按生理功能又可為兩種阻斷型單抗(5C9和K1-70)和一種刺激型單抗(K1-18)[9]。重組TSHR基因表達技術的發展,配合目前已發現的TSHR單抗,使TSHR富亮氨酸重復結構域(LRD)可與M22和K1-70的Fab片段結合為抗原抗體復合物,以結晶形式得以提取[10,11]。這為后續研究中TSHR LRD與兩種不同效應的單克隆抗體間分子的相互作用提供助益[10,11]。

 

當前多項研究成果證實,體外環境中的小鼠胚胎干細胞可以通過TSH刺激,定向轉化為功能正常的甲狀腺濾泡細胞。這為長期接受激素替代治療的甲狀腺疾病患者,開辟了功能恢復性治療的新前景[12,13]。我們在近期的研究中還建立了Graves眼病(GO)的小鼠模型[14],并制備了具有熱穩定性的TSHR LRD制劑,shou次解析了無配體的糖蛋白激素受體結構域的晶體結構(2.83 Å分辨率)[15]。這些重大的科學結果不斷促進對AITD患者診斷、監測以及管理的改進。

 

TRAb的體外應用實例

 

如上所述,在Graves病發病機制中,患者血清中的自身抗體對TSHR的刺激起核心作用。因TRAb檢測的重要性,TRAb的檢測方法也歷經了多代的發展:

 

一代檢測:

液相檢測法,利用血清TRAb可以抑制放射性I-125標記的TSH與TSHR相結合的特性,使用聚乙二醇將抗原抗體復合物沉淀[16]。該檢測法是Graves病診斷的一個里程碑。在早期開展的生物檢測法中,通常以刺激型抗體TSAB或TSH對表達TSHR的活細胞進行刺激,以其產生的第二信使cAMP作為檢測標志物來間接檢測TRAb。該試驗法耗時較久且流程復雜,不適宜大規模檢測。一代液相法作為替代方案改變了這一局面。

 

二代檢測:

第二代檢測改為固相檢測法,樣品中的TRAb與固定在ELISA微孔或塑料管上的TSHR相結合,隨后與生物素或I-125標記的TSH反應實現檢測[17]。固相檢測法實現了非放射性同位素標記和檢測自動化,與第一代檢測法相比,提高了方法學的靈敏度和特異性。

 

三代檢測:

在新的第三代檢測中,以M22-生物素替代二代檢測中的TSH-生物素,從而進一步提高了靈敏度和特異性[18]。與二代檢測中TSH與TSHR間的結合相比,M22因其復合物不易解離,在TRAb的競爭抑制法檢測中更具有優勢。這一特性使配體在嚴格的洗滌步驟里保持緊密結合,使其更適合用于自動化檢測系統。第三代TRAb檢測目前在各地的各個平臺上廣泛應用。即使檢測時長控制在半小時內,也能保持良好的靈敏度和特異性[18,19]。

 

TRAb的濃度通常以IU/L表示,單位定義參考了國家生物標準和控制研究所(NIBSC)提供的世界衛生組織(WHO)標準物質。該類物質通常用于TRAb檢測方法的校準。第一代標準物質(編號90/672)源自一位患者的捐贈。隨著第一代標準物質的耗竭,M22™的開發誕生了第二代國際標準物質(編號08/204)。在NIBSC 08/204標準物質中,每支安瓿的正常人血清中含有1 μg凍干M22 IgG。當前M22™已規模化投產,實現了從實驗室研究向產業化生產的轉變。(RSRTJ解讀:保證了M22的產出及供應問題。)

 

TSHR的體外應用實例

 

作為甲狀腺自身抗體的靶抗原之一,TSHR固有的不穩定性和難以純化是阻礙其大規模應用的難點。(RSRTJ解讀:生產廠家常見問題)RSR利用M22或K1-70兩款單抗的 Fab片段對TSHR LRD部分進行穩定化,克服了上述困難,從而進一步探究兩種抗原抗體復合物的分子結構[10,11]。受限于游離TSHR較差的穩定性,我們至今未能成功純化游離態TSHR LRD。因此通過系統性誘發定向突變,獲取熱穩定性抗原蛋白的策略已證明其價值。RSR對人TSHR片段22 - 260 (TSHR260)序列中的氨基酸進行系統性突變,并對突變蛋白在42℃條件下的熱穩定性進行了測試。經過一系列篩選和重組,我們最終獲得包含六處突變的強熱穩定性TSHR。該突變抗原命名為TSHR260-JMG55,其穩定性約為野生型TSHR260的900倍[15]。(RSRTJ解讀:RSR新品-TRAb SPEC試劑盒采用了該原料。)

 

用TSHR260-JMG55替換對應片段后的全長TSHR,無論是對TSH或M22的刺激信號反饋,還是結合Graves病患者的TSHR自身抗體時,耐熱型TSHR均與野生型TSHR的性能表現接近[15]。這些試驗均證實,耐熱突變不影響TSHR本身的抗原性。

 

實戰應用

穩定的濃縮TSHR260-JMG55制劑可用于TRAb檢測法的特異性確認。當送檢樣品中TRAb檢測結果不明確時,使用TSHR260-JMG55制劑與待確認樣本共同孵育可實現特異性確認試驗。如果測試樣品中存在TRAb,則被TSHR260-JMG55結合,結合處理后抗體水平降低的現象,可解讀為抗體陽性。(RSRTJ解讀:RSR新品-TRAb SPEC試劑盒的檢測原理。)此外,耐熱的純化TSHR260-JMG55也可用于TRAb新檢測法的研發。

 

TSHR的體內應用研究

 

 

在目前的設想中,穩定的TSHR制劑可以對患者體內的血清TRAb特異性免疫吸附。在需要從患者外周循環中緊急清除TRAb的危急臨床危重情況下,通過TRAb與TSHR260-JMG55結合的機制,將TRAb從患者血漿中分離,從而提供快速有效的治療效果。

 

 

TSHR阻斷型人單抗K1-70是一種針對TSH和刺激型抗體產生刺激信號的“天然”強抑制劑[20]。K1-70用于人體可實現對Graves病和Graves眼病(GO)中的甲狀腺功能亢進的控制,以及對甲狀腺癌的病程進展產生潛在的收益[21-23]。此外,利用K1-70對TSHR的高親和性和特異性,可能有助于組織影像學和輔助藥物進行靶向定位。(RSRTJ解讀:原料 K1-70的擴展應用)

 

 

腫瘤治療展望

 

在甲狀腺癌的控制策略上也可提供新思路:通過一種含TSH片段的納米脂質體,裝載化療藥物后靶向到達病灶處的TSHR[24]。另一種方法基于TSHR結合碳納米管,這種納米管能將外部光能轉化為熱能,從而在局部殺死癌細胞[25]。此外,針對TSHR的小分子拮抗劑,通過抑制信號通路的方法來抑制甲狀腺癌進展[26]。目前在Graves病患者的臨床試驗中,采用K1-70單次遞增劑量給藥,已開展涉及安全性、耐受性、藥代動力學和藥效學的I期臨床研究(結果已于22年發表)。

 

K1-70藥用化實例


一名患有Graves病、嚴重GO和局部晚期伴遠端轉移的高分化甲狀腺濾泡癌的女性患者,曾接受了K1-70作為藥物的藥效觀察[27,28]。給藥前該患者GO臨床活動評分(CAS)為6/7,復視,雙眼突出量21 mm,伴水腫、眼瞼腫脹、眼球運動時疼痛、眼瞼紅斑。她開始接受為期3周,個體化定制劑量的K1-70用藥,旨在中和她體內高水平的促甲狀腺刺激型自身抗體。第一次給藥時TRAb為130 IU/L,甲狀腺刺激活性>2000%。該患者同時服用樂伐替尼治療甲狀腺癌。患者反饋稱在開始K1-70治療后不久,她的眼部癥狀有所改善;CAS提高到0-1/7,雙側突出量改善為19 mm,可通過手術矯正復視。接受K1-70治療期間,患者恢復了駕駛能力,GO一并轉入穩定期。在樂伐替尼因副作用而停藥期間,僅K1-70單獨用藥,也觀察到腫瘤進展放緩。在持續K1-70治療2年且劑量提高至120 mg/次時,該患者身上仍未觀察到不良反應。

 

這些早期研究表明,用K1-70阻斷TSHR活性的體內治療方式,在控制Graves病、GO和甲狀腺癌中甲狀腺功能亢進上具有廣闊的應用前景。

 

 

 

更多關于RSR廠家抗體的介紹:RSR甲狀腺自身免疫系列抗原抗體

 

 

 

參考文獻:Furmaniak, J., et al. "Practical applications of studies on the TSH receptor and TSH receptor autoantibodies." Endocrine 68.2 (2020): 261-264.    

 

 

TEL:22-83726755

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